細(xì)胞凍存:細(xì)胞培養(yǎng)的傳代及日常維持過程中,在培養(yǎng)器具、培養(yǎng)液及各種準(zhǔn)備工作方面都需大量的耗費(fèi),而且細(xì)胞一旦離開活的開始原代培養(yǎng),它的各種生物特性都將逐漸發(fā)生變化并隨著傳代次數(shù)的增加和體外環(huán)境條件的變化而不斷有新的變化。因此及時(shí)進(jìn)行細(xì)胞凍存十分必要。細(xì)胞冷凍儲(chǔ)存在-70℃冰箱中可以保存一年之久;細(xì)胞儲(chǔ)存在液氮中,溫度達(dá)-196℃,理論上儲(chǔ)存時(shí)間是無限的。原理:細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融,實(shí)驗(yàn)證明這樣可以較大限度的保存細(xì)胞活力。如今細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑,這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對(duì)水的通透性,加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外,減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成,從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法,這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時(shí)間內(nèi)即融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對(duì)細(xì)胞造成損傷。無血清細(xì)胞凍存液使用方法:按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。無錫正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家供應(yīng)
無血清細(xì)胞凍存液與含血清細(xì)胞凍存液對(duì)比:傳統(tǒng)的細(xì)胞凍存液是使用培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例混合,其中DMSO的含量是10%,血清的含量是10%,統(tǒng)稱為含血清細(xì)胞凍存液。含血清細(xì)胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法,如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘,然后移至-20℃冰箱30分鐘,再移至-80℃冰箱保存16-18個(gè)小時(shí)(或隔夜),較后才移至液氮罐中進(jìn)行長期的儲(chǔ)存??梢?,含血清細(xì)胞凍存液凍存細(xì)胞時(shí)遇到的問題:1.凍存細(xì)胞時(shí)需現(xiàn)配凍存液(如購買市面上通用的含血清細(xì)胞凍存液,此步可省略)。2.需要程序降溫(4℃→-20℃→-80℃→液氮),步驟繁瑣,耗時(shí)耗力。3.含血清,細(xì)胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風(fēng)險(xiǎn)更高。4.血清批次、品質(zhì)間差異導(dǎo)致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存,且不能原位(如孔板)凍存。正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液價(jià)格無血清凍存液使用方法:將凍存管直接轉(zhuǎn)移至-80C水箱中冷凍保存。
細(xì)胞凍存注意事項(xiàng):1.取細(xì)胞的過程中注意帶好防凍手套,護(hù)目鏡。此項(xiàng)尤為重要,細(xì)胞凍存管可能漏入液氮,解凍時(shí)凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致炸列。2.凍存液的問題:凍存液的配置已是常識(shí),在這里不作詳述,但二甲基亞砜(DMSO)對(duì)細(xì)胞不是完全無毒副作用,在常溫下,二甲基亞砜對(duì)細(xì)胞的毒副作較大,因此,必須在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。如果復(fù)蘇溫度太慢,會(huì)造成細(xì)胞的損傷,二甲基亞砜(DMSO)選擇進(jìn)口產(chǎn)品。3.離心前須加入少量培養(yǎng)液。細(xì)胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度,以減少對(duì)細(xì)胞的損傷。
細(xì)胞凍存時(shí)間和操作步驟:1、首先我們需要凍存培養(yǎng)液,通常細(xì)胞凍存液含10%的DMSO,或者是甘油、10-20%的小牛血清;、取對(duì)數(shù)生長期細(xì)胞,并且還需要用PBS進(jìn)行清洗,需要注意在這里要丟棄掉舊的細(xì)胞凍存液;3.去除PBS,加入適量的胰蛋白酶,以覆蓋住培養(yǎng)皿表面為宜,然后把單層生長的細(xì)胞消化掉;然后離心1000rpm5min時(shí)間;4、去除胰蛋白酶,加入凍存培養(yǎng)液,輕輕吹打使細(xì)胞的分布變得均勻,調(diào)節(jié)細(xì)胞較終的密度為5×106/ml-1×107/ml,需要注意這是較佳的細(xì)胞密度;5、將細(xì)胞裝入凍存管之中,每管的含量應(yīng)該保持在1~1.5ml之間。在凍存管上標(biāo)明細(xì)名稱、時(shí)間、操作者;6、較后要說的就是細(xì)胞凍存的時(shí)間了,對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序來說,需要進(jìn)行梯度降溫,降溫速率-1~-2℃/min,一旦溫度達(dá)到-25℃以下時(shí),那么就可增至-5℃~-10℃/min;等到-100℃的時(shí)候,可迅速的放入到液氮之中。無血清細(xì)胞凍存液存儲(chǔ)條件:為避免重復(fù)凍融過程可能導(dǎo)致的凍存液品質(zhì)下降和性能降低。
無血清細(xì)胞凍存液的使用方法及注意事項(xiàng):1.將分裝好的細(xì)胞凍存管,直接置于-80度冰箱過夜保存,次日投入液氮中保存即可備注:1、凍存過程中,第2步在冰袋附近操作時(shí),低溫避免保護(hù)劑對(duì)細(xì)胞造成損傷。2、細(xì)胞凍存管一定要保證完全密封,否則在復(fù)蘇過程中有可能會(huì)炸(1)提前開啟水浴鍋,溫度調(diào)節(jié)到37(2)將凍存的細(xì)胞冷凍管從液氮中取出,迅速置于水浴鍋中融化,盡量1min融化,時(shí)間越短,對(duì)細(xì)胞影響越小。(3)將融化后的含細(xì)胞的冷凍保存液迅速析出置于新鮮培養(yǎng)基中充分混勻,(如細(xì)胞冷凍保存液為500ul,則加入到5ml新鮮培養(yǎng)基中,如細(xì)胞冷凍保存液位1ml,則加入10ml新鮮培養(yǎng)基中。)(4)混勻后立即離心,800轉(zhuǎn),3min即可離心結(jié)束后棄上清,加入預(yù)溫的新鮮培養(yǎng)液。(5)混勻后分瓶置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。(二氧化碳濃度根據(jù)培養(yǎng)基要求決定,通常為5%【注意事項(xiàng)】細(xì)胞系凍存密度備注正常人成纖維細(xì)胞1~310cells/ml雜交瘤細(xì)胞1~310cells/ml某些hybridoma會(huì)因冷凍濃度太高而在解凍24小時(shí)后死去。無血清細(xì)胞凍存液 產(chǎn)品原理:無血清細(xì)胞凍存液,含多種保護(hù)劑成分。南京無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品介紹
無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品特色:可微量,原位凍存,例如雜交瘤細(xì)胞的凍存,省時(shí)高效。無錫正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家供應(yīng)
干細(xì)胞無血清凍存液操作事項(xiàng):使用說明:1.細(xì)胞消化和計(jì)數(shù),用胰酶對(duì)待凍存的細(xì)胞進(jìn)行消化,并對(duì)細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)。2.1000轉(zhuǎn)/min離心5分鐘(4℃),去掉上清。3.根據(jù)細(xì)胞計(jì)數(shù)的情況,加入適量的干細(xì)胞無血清凍存液,使細(xì)胞密度在1×106左右(或根據(jù)自己希望達(dá)到的細(xì)胞密度)。4.輕輕地重懸細(xì)胞(務(wù)必重懸均勻)。5.將重懸的細(xì)胞按等份加入到滅菌的凍存管(需提前做好標(biāo)記或者貼上標(biāo)簽)中,旋緊凍存管蓋。6.將凍存管放入凍存盒中,然后將凍存盒直接放入-80℃。7.第二天將細(xì)胞從-80℃轉(zhuǎn)移到液氮中。注意事項(xiàng):1.用處于對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞進(jìn)行凍存。2.控制好胰酶的消化時(shí)間,切記消化過度,會(huì)影響復(fù)蘇效果。3.重懸細(xì)胞的過程中,請(qǐng)務(wù)必要輕柔,以免損傷細(xì)胞,但同時(shí)也一定要充分重懸,這樣細(xì)胞在復(fù)蘇時(shí)才不會(huì)成團(tuán)。4.細(xì)胞操作請(qǐng)注意無菌。無錫正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家供應(yīng)