外泌體的提取主要包括以下幾種方式。一是超速離心法,這是目前外泌體提取較常用的方法。此種方法得到的外泌體量多,但是純度不足,電鏡鑒定時(shí)發(fā)現(xiàn)外泌體聚集成塊,由于微泡和外泌體沒(méi)有非常統(tǒng)一的鑒定標(biāo)準(zhǔn),也有一些研究認(rèn)為此種方法得到的是微泡不是外泌體。二是過(guò)濾離心,這種操作簡(jiǎn)單、省時(shí),不影響外泌體的生物活性,但同樣存在純度不足的問(wèn)題。三是密度梯度離心法,用此種方法分離到的外泌體純度高,但是前期準(zhǔn)備工作繁雜,耗時(shí),量少。外泌體檢測(cè)作為一種新型的液體活檢熱點(diǎn)技術(shù)已被許多臨床科研機(jī)構(gòu)普遍地應(yīng)用于一些病癥和疾病的無(wú)創(chuàng)診斷。以提取尿液中的外泌體為例,每次至少需要200毫升的尿液量。北京外泌體提取試劑直銷廠家
外泌體與肺病預(yù)后:外泌體mirRNA和蛋白質(zhì)被認(rèn)為是NSCLC的預(yù)后因子。Dejima等在研究NSCLC患者預(yù)后的生物標(biāo)志物時(shí)發(fā)現(xiàn),外泌體miR-4257和miR-21的含量顯著上升。此外,還有研究表明,低水平miR-146a-5p的NSCLC患者較高水平miR-146a-5p的NSCLC患者有更高的復(fù)發(fā)率。Sandfeld-Paulsen等在研究276例NSCLC患者血漿的外泌體時(shí)發(fā)現(xiàn),NY-ESO-1是其中對(duì)低生存率有顯著影響的標(biāo)志物。Silva等利用TaqMan低密度芯片的方法系統(tǒng)分析了28位NSCLC患者體內(nèi)的365種miRNA,其中l(wèi)et-7f、miR-30e-3p和miR-20b表達(dá)均下調(diào),進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),let-7f和miR-30e-3p水平可以區(qū)分早期和晚期NSCLC患者,高水平let-7f和miR-30e-3p與不良預(yù)后密切相關(guān)。開(kāi)封正規(guī)外泌體提取試劑生產(chǎn)廠家同時(shí)對(duì)超速離心機(jī)的設(shè)備要求以及操作程序的培訓(xùn)較大提高了提取成本。
研究表明被特定部位的細(xì)胞獲取的一些病癥外泌體可為一些病癥的轉(zhuǎn)移準(zhǔn)備轉(zhuǎn)移前微環(huán)境。用肺轉(zhuǎn)傾向的一些病癥細(xì)胞來(lái)源的外泌體處理小鼠后可使骨轉(zhuǎn)傾向的一些病癥細(xì)胞重新定向。外泌體的蛋白質(zhì)組學(xué)分析發(fā)現(xiàn)不同部位傾向性的一些病癥細(xì)胞來(lái)源的外泌體具有不同的整合素(integrin)表達(dá)譜,整合素α6β4和α6β1與肺轉(zhuǎn)有關(guān),而整合素αvβ5與肝轉(zhuǎn)有關(guān)。敲低整合素α6β4和αvβ5可減少外泌體被靶部位細(xì)胞獲取,進(jìn)而分別降低了肺和肝的轉(zhuǎn)移。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)外泌體整合素被細(xì)胞獲取后啟動(dòng)了Src的磷酸化和促炎的S100基因的表達(dá)。較后通過(guò)臨床數(shù)據(jù)分析顯示外泌體整合素可作為預(yù)測(cè)一些病癥轉(zhuǎn)移的部位傾向性的診斷指標(biāo)。
外泌體提?。?、過(guò)濾。超濾膜也可用于分離外泌體。根據(jù)外泌體的大小,從蛋白質(zhì)和其他大分子中分離外泌體。較常見(jiàn)的過(guò)濾膜具有0.8μm、0.45μm或0.22μm的孔徑,可用于收集大于800nm、400nm或200nm的外泌體,也有設(shè)計(jì)成微柱多孔硅纖毛結(jié)構(gòu)以分離40-100nm外泌體:不過(guò),該方法由于過(guò)濾膜的粘附,可能會(huì)損失外泌體,并且過(guò)濾時(shí)的壓力和剪切力,可能會(huì)使外泌體變形受損。2、基于聚合物的沉淀技術(shù)?;诰酆衔锏某恋砑夹g(shù)通常包括將樣本與含聚合物的沉淀溶液混合,在4℃溫育并低速離心。用于聚合物沉淀的較常見(jiàn)聚合物之一是聚乙二醇(PEG)。用這種聚合物沉淀具有許多優(yōu)點(diǎn),包括對(duì)分離的外泌體影響小、pH中性等。目前大多數(shù)快速分離外泌體的商品化試劑盒都是基于此方法。然而基于聚合物的沉淀方法可能會(huì)同時(shí)分離非囊泡污染物(包括脂蛋白)而且,聚合物材料的混雜可能會(huì)影響下游分析。外泌體提取:可分離到大小相近的囊泡顆粒。
可以。為了能夠高效提取細(xì)胞培養(yǎng)上清中的外泌體,磁珠可重復(fù)使用5次(同一樣品)。試劑盒里的緩沖液含5次提取需要的量。1mL體積以上細(xì)胞上清樣本建議進(jìn)行濃縮后再回收,提取時(shí)可進(jìn)行反復(fù)抽提,提高提取效率。用血液樣品進(jìn)行實(shí)驗(yàn)時(shí),需要根據(jù)磁珠狀況來(lái)判斷是否能重復(fù)利用;若磁珠發(fā)生聚集,利用渦旋儀也無(wú)法使磁珠分散,不建議繼續(xù)使用。詳情參考操作說(shuō)明書。太好了,這樣實(shí)驗(yàn)成本瞬間就降下來(lái)了,那樣品純化所需的比較低量是?老師:使用旋轉(zhuǎn)器的需要500μL以上,使用離心管混合器的需要100μL。樣品量更少的情況下加TBS到所需比較低量后再使用ExosomeCapture固定化磁珠。同學(xué):電鏡分析需要外泌體的量是多少?用于外泌體提取的體液收集注意事項(xiàng):抽血技巧。合肥正規(guī)外泌體提取試劑廠家
利用化合物沉淀將法外泌體沉淀出來(lái)。北京外泌體提取試劑直銷廠家
外泌體的提取、分離方法:梯度密度離心法。研究發(fā)現(xiàn),外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間,因此,可以采用密度梯度離心法來(lái)分離外泌體。該方法是將超速離心結(jié)合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結(jié)合,原理是先除去非囊泡物質(zhì),再通過(guò)梯度密度濃縮提取外泌體,該方法可以得到相對(duì)較為純凈的外泌體。傳統(tǒng)的梯度密度方法通常需要離心16h,但是2012年,研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡,因此,該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時(shí)間不充足,污染物質(zhì)可能和外泌體保持在相同的密度層,特別是這個(gè)密度范圍又比較寬。北京外泌體提取試劑直銷廠家