合肥支原體檢測(cè)方法學(xué)

美國(guó)藥典USP40〈1223〉對(duì)NAT法支原體檢測(cè)產(chǎn)品有關(guān)性能驗(yàn)證的要求，包括專屬性、檢測(cè)限（LOD）、耐用性、重現(xiàn)性。其中對(duì)于專屬性的定義及驗(yàn)證方法如下：定義：替代性定性微生物方法的特異性定義為其檢測(cè)特定于該技術(shù)的一系列挑戰(zhàn)微生物的能力。“微生物范圍”可以定義為代    表對(duì)患者或產(chǎn)品風(fēng)險(xiǎn)的有限數(shù)量的微生物，在生產(chǎn)環(huán)境和產(chǎn)品故障中發(fā)現(xiàn)的微生物，適合于測(cè)量替代方法的有效性的微生物，以及在適合于方法和產(chǎn)品的形態(tài)學(xué)和生理屬性方面具有 代    表性的微生物。證明：特異性是通過(guò)藥典和替代方法中微生物的挑戰(zhàn)面板的可比回收率來(lái)證明的。微生物挑戰(zhàn)超出了檢測(cè)或定量的限度，但達(dá)到了可以衡量方法有效性的水平。南京正揚(yáng)的支原體檢測(cè)試劑盒的價(jià)格。合肥支原體檢測(cè)方法學(xué)

日本藥典JPXVⅢ〈G3-14-170〉對(duì)NAT法支原體檢測(cè)產(chǎn)品有關(guān)性能驗(yàn)證的要求，包括檢測(cè)限（LOD）、專屬性、耐用性、可比性。其中對(duì)于專屬性的描述及要求如下：專屬性是指在樣本中能夠明確檢測(cè)到目標(biāo)核酸存在的能力。核酸擴(kuò)增法的專屬性依賴于引物/探針的選擇和測(cè)試條件的嚴(yán)謹(jǐn)性(包括擴(kuò)增和檢測(cè)步驟)。選擇特異的及對(duì)絕大多數(shù)支原體(柔膜體綱，如支原體屬和相關(guān)種屬如解脲支原體，螺原體，無(wú)膽甾原體等)保守的序列來(lái)設(shè)計(jì)引物/探針是相當(dāng)重要的。核酸擴(kuò)增法檢測(cè)支原體種屬的能力應(yīng)該由章節(jié)中所列的參考支原體的實(shí)驗(yàn)結(jié)果來(lái)確認(rèn)，而不推薦采用引物/探針與數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)的方法，(JPXVⅢ提供了用作檢測(cè)的建議支原體種類)專屬性。合肥雞毒支原體檢測(cè)公司生物制品放行時(shí)支原體檢測(cè)的金標(biāo)準(zhǔn)。

我國(guó)藥典規(guī)定的支原體檢測(cè)方法為培養(yǎng)法和指示細(xì)胞染色法。但這些方法也存在一些不盡人意之處，如所需時(shí)間較長(zhǎng)，有的操作復(fù)雜等?！吨袊?guó)藥典2020年版3301支原體檢測(cè)法》中指出：除培養(yǎng)法和DNA染色法外，也可采用經(jīng)國(guó)家藥品檢定機(jī)構(gòu)認(rèn)可的其他方法，對(duì)支原體進(jìn)行檢測(cè)。由于支原體檢測(cè)存在必要性，如何盡可能提高檢測(cè)的準(zhǔn)確率以及效率尤為關(guān)鍵。不少業(yè)內(nèi)指導(dǎo)原則指出，支原體的核酸法檢測(cè)，通過(guò)嚴(yán)格且充分的方法學(xué)驗(yàn)證，可以替代藥典中對(duì)的培養(yǎng)法與DNA染色法。

常用的支原體檢測(cè)方法有傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)法、指示細(xì)胞培養(yǎng)法（DNA染色法）、ELISA法、PCR法等。指示細(xì)胞培養(yǎng)法（DNA染色法）則靈敏度比較低，因背景熒光的存在，細(xì)胞輕度支原體污染不易檢出；細(xì)胞裂解死亡產(chǎn)生碎片也會(huì)被熒光染料染色被誤認(rèn)為是支原體染色所致造成假陽(yáng)性；另外，熒光染色法一般要求培養(yǎng)無(wú)污染的指示細(xì)胞作為對(duì)照，增加了檢測(cè)的工作量。目前，PCR法為主流的支原體檢測(cè)手段，PCR法比傳統(tǒng)分離培養(yǎng)法檢測(cè)時(shí)間大縮短，且靈敏度高。歐洲藥典對(duì)支原體檢測(cè)的要求有哪些？

qPCR法支原體檢測(cè)的原理：PCR反應(yīng)過(guò)程中可通過(guò)加入熒光標(biāo)記的特異性探針檢測(cè)PCR產(chǎn)物生成的量。帶有一對(duì)熒光分子的探針與樣品中DNA通過(guò)堿基互補(bǔ)配對(duì)的原則進(jìn)行結(jié)合，隨著PCR反應(yīng)的進(jìn)行，Taq聚合酶合成DNA，同時(shí)沿5’-3’方向水解DNA探針，一對(duì)熒光分子隨著探針的水解而分開(kāi)，發(fā)出熒光信號(hào)。通過(guò)連續(xù)監(jiān)測(cè)反應(yīng)體系中熒光讀數(shù)的變化，可即時(shí)反映特異性擴(kuò)增產(chǎn)物量的變化。具備靈敏度高、特異性好、操作簡(jiǎn)單、用時(shí)較短等優(yōu)點(diǎn)。日本藥典JPXVⅢ〈G3-14-170〉對(duì)NAT法支原體檢測(cè)產(chǎn)品有關(guān)性能驗(yàn)證的要求，包括檢測(cè)限（LOD）、專屬性、耐用性、可比性。其中對(duì)于檢測(cè)限的描述及要求如下：檢測(cè)限是一個(gè)分析方法對(duì)樣本中目標(biāo)核酸能檢測(cè)出的蕞低量，但無(wú)需準(zhǔn)確定量。在建立分析方法的檢測(cè)限時(shí)，需要確定核酸擴(kuò)增分析的陽(yáng)性臨界值。陽(yáng)性臨界值是95%的測(cè)試中能被檢測(cè)到的每體積樣本中的目標(biāo)序列拷貝數(shù)。確定陽(yáng)性臨界值需對(duì)表征過(guò)的且已校準(zhǔn)(CFU或核酸拷貝數(shù))的支原體參考株或國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)株做一系列的梯度稀釋，并于不同時(shí)間(日間)進(jìn)行檢測(cè)以檢查測(cè)試間的差異。qPCR法支原體檢測(cè)方法有哪些。鄭州PCR法支原體檢測(cè)公司

日本藥典對(duì)支原體檢測(cè)的要求。合肥支原體檢測(cè)方法學(xué)

qPCR法支原體檢測(cè)試劑盒的操作流程包括支原體DNA提取、qPCR試劑配制、qPCR加樣及上機(jī)檢測(cè)、結(jié)果分析四個(gè)環(huán)節(jié)。支原體DNA提取包含樣品前處理（離心分離上清等）、樣品裂解液消化、支原體DNA與磁珠結(jié)合、一次洗滌、二次洗滌、洗脫；qPCR試劑在配制時(shí)需先將試劑放置于室溫，避光放置30min，直至試劑融化，各個(gè)試劑組分混勻后按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行配制并分裝。在實(shí)驗(yàn)室，注意分區(qū)操作，降低實(shí)驗(yàn)發(fā)生污染的風(fēng)險(xiǎn)。用qPCR法進(jìn)行支原體檢測(cè)時(shí)，出現(xiàn)擴(kuò)增曲線異常的可能原因是什么？①如出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增現(xiàn)象，該問(wèn)題是由反應(yīng)管未蓋緊或密閉性差引起溶液蒸發(fā)而造成。上機(jī)前確保管蓋密閉，反應(yīng)結(jié)束后查看八聯(lián)管或96孔板各管液面是否一致。與設(shè)備硬件相關(guān)，需咨詢硬件供應(yīng)商解決。②如出現(xiàn)擴(kuò)增曲線不平滑現(xiàn)象：可能與ROX加入量不足相關(guān)，個(gè)別設(shè)備有ROX校正功能，不同型號(hào)設(shè)備對(duì)ROX的需求量會(huì)有差異，需設(shè)置實(shí)驗(yàn)摸索合適的ROX加入量。合肥支原體檢測(cè)方法學(xué)